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Desde un punto de vista histológico, hemos podido observar la existencia de actividad neoformadora intensa en ambos grupos poblacionales. Podemos corroborar los estudios de Liu16 de 2007 en los que considera el β-fosfato tricálcico como un material prometedor en procesos de regeneración ósea, con un potente efecto osteoinductor17,18. Asimismo, destacan los estudios de Boix18 en los que evalúa la eficacia de un bio- material constituido en parte por β-fosfato tricálcico con res- pecto a no rellenar el alveolo, de forma similar al estudio reali- zado por nosotros, pero este con una muestra más pequeña y en perros; concluye que la ausencia de biomaterial, como ya constatábamos a través de múltiples autores19-24 colapsa el proceso alveolar en comparación con aquellos que han sido rellenados, desde un punto de vista clínico por un lado, pero por otro, desde un punto de vista histológico, encuentra que existe una cantidad importante de hueso neoformado sin diferencias significativas entre maxilar o mandíbula, a diferen- cia del encontrado en los alveolos injertados donde encuen- tran una cantidad importante de tejido óseo neoformado25-27 pero con diferencias significativas entre mandíbula y maxilar con una diferencia aproximada del 20 % entre ambos. Estas conclusiones vuelven a manifestar el potencial osteoinductor del β-fosfato tricálcico así como nos abre una puerta de inves- tigación clínica humana para poder comparar sus efectos a nivel maxilar con respecto a la mandíbula20,25. Por otro lado, concluye que es de vital importancia que la granulometría del biomaterial sea alta para permitir la osteoinducción y el correcto comportamiento osteobiológico, en especial en este estudioenconcretoeldiámetromedidopordifracciónláser de los gránulos del biomaterial oscilaba entre las 200 y 500 μm12.
CONCLUSIONES
Desde un punto de vista clínico, el resultado obtenido es satisfactorio en base a la ausencia de complicaciones, la esta- bilidad quirúrgica de los implante colocados, así como de la radiopacidad obtenida. Se evidencia una cierta maduración del tejido óseo y un inicio de reabsorción del betafosfato. Podemos constatar ausencia de interfase entre el biomaterial y el hueso residual. En base a estos resultados satisfactorios con este biomaterial de granulometría y porosimetría espe- cífica se abren nuevas líneas de investigación para aumentar la muestra de estudio así como su comparación con otros biomateriales y la ausencia de este.
BIBLIOGRAFÍA
1. Darby I, Chen S, De Poi R. Ridge preservation: what is it and when should it be considered. Aust Dent J 2008; 53(1): 11-21.
2. Darby I, Chen ST, Buser D. Ridge preservation techniques for implant therapy. Int J Oral Maxillofac Implants 2009; 24 Suppl: 260-71.
3. El Helow K, El Askary Ael S. Regenerative barriers in immediate implant placement: a literature review. Implant Dent 2008; 17(3): 360-71.
4. Elian N, Cho SC, Froum S, Smith RB, Tarnow DP. A simplified socket classification and repair technique. Pract Proced Aesthet Dent 2007; 19: 99-104.
5. Ellingsen JE, Thomsen P, Lyngstadaas P. Advances in dental implant materials and tissue regeneration. Periodontology 2000 2006; 41: 136-56.
6. Seibert JS. Reconstruction of deformed, partially edentulous ridges, using full thickness onlaygrafts.Part1.Techniqueandwoundhealing.CompendContinEduc Dent
1983; 4: 437-453.
7. Donath K. Preparation of histologic sections. Norderstedt, Exakt-Kulzer-Publication,
Germany, 1995 pp.1-16.
8. Bozidar MB Brkovic, Hari S, Prasad BS. Simple preservation of a maxillary extraction
socket using beta tricalcium phosphate with type I Collagen: preliminary clinical and
histomorphometric observations. JADA 2008; 74-6: 523-28.
9. Brkovic BM, Prasad HS, Rohrer MD, Konandreas G, Agrogiannis G, Antunovic
D, Sándor GK. Beta-tricalcium phosphate/type I collagen cones with or without a barrier membrane in human extraction socket healing: clinical, histologic, histo- morphometric, and immunohistochemical evaluation. Clin Oral Investig 2011; doi: 10.1007/s00784-011-0531-1.
10. Zerbo IR, Zijderveld SA, de Boer A, Bronckers AL, de Lange G, ten Bruggenkate CM, Burger EH. Histomorphometry of human sinus floor augmentation using a porous beta-tricalcium phosphate: a prospective study. Clin Oral Implants Res 2004; 15(6): 724-32.
11. Zerbo IR, Bronckers AL, de Lange G, Burger EH. Localisation of osteogenic and osteoclastic cells in porous beta-tricalcium phosphate particles used for human maxillary sinus floor elevation. Biomaterials 2005; 26(12): 1445-51.
12. Martinez A, Franco J, Saiz E, Guitian F. Maxillary sinus floor augmentation on humans: Packing simulations and 8 months histomorphometric comparative study of anorganic bone matrix and β-tricalcium phosphate particles as grafting materials. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl 2010 Jun 15; 30(5): 763-9.
13. Horowitz RA, Mazor Z, Miller RJ, Krauser J, Prasad HS, Rohrer MD. Clinical evaluation alveolar ridge preservation with a beta-tricalcium phosphate socket graft. Compend Contin Educ Dent 2009; 30(9): 588-90, 592, 594 passim; quiz 604, 606.
14. Combes C, Rey C. Adsorption of proteins and calcium phosphate materials bioac- tivity. Biomaterials 2002; 23(13): 2817-23.
15. Liu G, Zhao L, Cui L, Liu W, Cao Y. Tissue-engineered bone formation using human bone marrow stromal cells and novel beta-tricalcium phosphate. Biomed Mater 2007; 2(2): 78-86.
16. Markovid S, Veselinovid L, Lukid MJ, Karanovid L, Bračko I, Ignjatovid N, Uskokovid D. Synthetical bone-like and biological hydroxyapatites: a comparative study of crystal structure and morphology. Biomed Mater 2011; 6(4): 045005.
17. Palti A, Hoch T. A concept for the treatment of various dental bone defects. Implant Dent 2002; 11(1): 73-8.
18. Boix D, Weiss P, Gauthier O, Guicheux J, Bouler JM, Pilet P, Daculsi G, Grimandi G. Injectable bone substitute to preserve alveolar ridge resorption after tooth extrac- tion 141astudyindog.JMaterSciMaterMed2006;17:1145-52.
19. Velasco Ortega E, Pato Mourelo J, Segura Egea JJ, Pérez Pérez O, Medel Soteras R. La utilización del betafosfato tricálcico como biomaterial en implantología oral. Av Periodon Implantol 2007; 19(3): 141-9.
20. Velasco Ortega E, Pato Mourelo J, Lorrio Castro JM, Cruz Valiño JM, Poyato Ferreira M. El tratamiento con implantes dentales post-extracción. Av Periodon Implantol 2007: 19 (Suppl): 35-42.
21. Velasco Ortega E, Pato Mourelo J, García Méndez A, Medel Soteras R, López Frías J. Estudio clínico e histológico del beta-fosfato tricálcico en la elevación del seno maxilar. Av Periodon Implantol 2008; 20(3): 147-54.
22. Becker W. Treatment of small defects adjacent to oral implants with various bioma- terials. Periodontology 2000 2003; 33: 26-35.
23. Becker W, Lynch SE Lekholm U, CaffesseR, Donath K. A comparison of ePTFE membranes alone or in combination with palatel derived growth factors and insuline like growth factor I or demineralized freeze dried bone in promoting bone formation arround inmediate extraction socket implants. J Periodontol 1992; 63: 929.
24. Cho KS, Choi, SH, Han KI, Chai JK, Wikesjo UM. Effects of pretreatment clinical parameters on bioactive glass implantation in intrabody periodontal defects. Clin Oral Implants Res 1998; 9: 419.
25. Araújo MG, Liljenberg B, Lindhe J. beta-Tricalcium phosphate in the early phase of socket healing: an experimental study in the dog. Clin Oral Implants Res 2010; 21(4): 445-54.
26. Araújo MG, Lindhe J. Dimensional ridge alterations following tooth extraction. An experimental study in the dog. J Clin Periodontol 2005; 32: 212-218.
27. Araujo MG, Lindhe J. Ridge alterations following tooth extraction with and without flap elevation: an experimental study in the dog. Clin Oral Impl Res 2009; 20: 545- 549.
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Estudio histológico e histomorfométrico del β-fosfato tricálcico postextracción como biomaterial estabilizador de la cresta alveolar: Ripollés De Ramón J et al.